体外培养细胞的染色体标本制备
1) 体外培养的细胞，在倒置镜下观察到有较多的分裂细胞（传代后24h，圆形发亮的细胞）时，加入秋水仙素溶液，终浓度为0.3μg/ml培养液；
2) 继续培养3h；
3) 胰酶消化收集细胞至离心管；
4) 离心1000转/min，离心10min，去上清；
5) Hanks液洗，离心，去上清；
6) 低渗处理：加入0.075mol/L KCl溶液8ml，置37℃恒温水浴中30min，用吸管稍吹打（同上）；
7) 固定及制片如外周血染色体的制备。
1. 秋水仙素处理时间过长，分裂细胞多，染色体短小；反之，则少而细长故秋水仙素的浓度及时间要准确掌握。
2. 固定液应在使用前临时配制。
3. 载玻片一定要洁净，否则染色体分散不好。
4. 染色体分裂指数低：患者处于非常时期（放、化疗期）；培养基营养成分不良；培养基pH偏低或偏高；PHA过量或不足；小牛血清质量不高；培养箱温度偏低；秋水仙素处理时间过短。
5. 接种的血样愈新鲜愈好。
6. 培养过程中，如发现血样凝集，可将培养瓶轻轻振荡，使凝块散开，继续放回37℃恒温箱内培养。
